Ad es con il comando:
$ x2p -R 1 K7G-template.pdb PAR00*/0000.xyz > r0001_0000-unordered.pdb
si convertono tutte le configurazioni relative alla replica 1 nei file 0000.xyz di tutte le traiettorie, usando il modello K7G-template.pdb, e si manda il risultato su STDOUT. Notare che le configurazioni che si ottengono non sono in ordine di tempo, ma seguono la sequenza con cui appaiono nelle varie traiettorie PAR0000, PAR0001, ...
Ad es con il comando:
$ order0.pl R=1 r0001_0000-unordered.pdb > r0001_0000.pdb
si riordinano nel tempo convertono tutte le configurazioni relative alla replica 1 nei file 0000.xyz di tutte le traiettorie, usando il modello K7G-template.pdb, e si manda il risultato su STDOUT
$ x2p -R 1 K7G-template.pdb PAR00*/0000.xyz| order0.pl R=1 > r0001_0000.pdb
$ awk '$2==1' PAR00??/REM_DIAGNOSTIC.0000 | sort -nk1 > r0001_0000.ene
La mappa degli scambi tra le varie repliche si può diagrammare con
$ plot PAR00??/REM_DIAGNOSTIC -1,2L'energia potenziale delle varie traiettorie si può diagrammare con
$ plot PAR00??/REM_DIAGNOSTIC -1,5L'energia potenziale della replica 1 si può diagrammare con
$ plot r0001_0000.ene -1,5
Per creare file con l'evoluzione temporale di una o più variabili configurazionali, si usa il programma (estendibile) analysis. Ad esempio, il seguente input produce l'evoluzione di tre parametri nella traiettoria loop_tmp.pdb: la distanza testa-coda, la distanza res4- res7, gli angoli di Ramachandran del residuo 7:
[frame=single,label=analysis.in,commandchars=\\\{\}] # name of the PDB file to analize: loop_tmp.pdb # head-to-tail K7G: & atom_distance 5 122 # K7G, CA 4-7 distance: & atom_distance 45 81 # Ramachandran angles of residue 7 & ramachandran 7
Il programma si lancia con
$ analysis < analysis.in
e crea un file per ogni variabile. Questi si possono rinominare opportunamente con comandi tipo
$ cp atom_distance.1.out r0001_0000.h2t
$ cp atom_distance.2.out r0001_0000.4t7
$ cp ramachandran.3.out r0001_0000.ram7Per creare istogrammi di probabilità di una variabile, si usa il comando histog. Ad esempio, per creare un istogramma ad area normalizzata con larghezza di canale
$ histog +.2i r0001_0000.h2t > r0001_0000.h2t.h
Per calcolare gli RMSD dalla struttura sperimentale 1 della chignolina,
considerando soltanto i
:
$ rmsd.sh -1 chigno-PDB-CA29.pdb -2 K7G-CA29.pdb chigno-01.pdb r0001_0000.pdb > r0001_0000.rmsd
Come parametri caratteristici della configurazione di questi polipeptidi
con (possibile)-turn si possono prendere alcune distanze interatomiche:
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Il ponte salino
stabilizza la
struttura estesa,
quella piegata
La presenza del -turn (che interessa i residui 4-5-6-7) è
evidenziata dal diagramma di Ramachandran del residuo 7. Se c'è il
turn, la sequenza è
.
Nella chignolina il residuo Gly7 è
.
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